篇一：细胞传代培养实验报告
细胞传代培养
一.实验目的
初步掌握哺乳动物细胞的原代培养与传代培养的基本操作过程，为生物技术在医学上的 应用打下基础。
二、原理
从生物体中取出某种组织或细胞，模拟体内生理条件，在人工培养条件下使其生存、生 长、繁殖或传代，这一过程称为细胞培养。细胞培养技术的最大优点是使我们得以直接观察 活细胞，并在有控制的环境条件下进行实验，避免了体内实验时的许多复杂因素，还可以与 体内实验互为补充，可同时提供大量生物性状相同的细胞作为研究对象，耗费少，比较经济， 因此成为生物学研究的重要手段。
细胞培养可分为原代培养和传代(继代)培养。直接从体内获取的组织细胞进行首次培养为 原代培养；当原代培养的细胞增殖达到一定密度后，则需要做再培养，即将培养的细胞分散 后，从一个容器以1：2或其他比率转移到另一个或几个容器中扩大培养，为传代培养，传 代培养的累积次数就是细胞的代数。
细胞培养是一种程序复杂、要求条件多而严格的实验性工作。所有离体细胞的生长都受 温度、渗透压、ph值、无机盐影响，消毒、配液等均有严格的规范和要求，特别是无菌操 作是细胞培养成败的关键。
三、材料和试剂
1、细胞：293细胞株
2、试剂：0.25％胰酶、1640培养基（含10％小牛血清）
3、仪器和器材：倒置显微镜，培养箱、电动枪，培养板，吸液枪，5ml玻璃吸管、酒精 灯等
四、操作步骤
1、将长满细胞的培养板中原来的培养液吸去。
2、加入1~2ml 0.25％胰酶溶液，使板底细胞都浸入溶液中。
3、马上吸走胰酶液 ，再次加入2ml左右的胰酶，同样马上吸去，再加入几滴胰酶放入培养箱中消化几分钟
4、用吸管将贴壁的细胞反复吹打成悬液，再按照 观察的生长情况确定的传代比例传代
5.根据确定的比例来取需要的量（剩余的细胞拿来做细胞计数），加入4ml左右的培养液
6.前后左右的来回震荡使细胞分散均匀后，将培养板放入培养箱
7.收拾整理超净台
附：消化液配制方法：
称取2.5克胰酶蛋白酶，加入100ml10xpbs+纯水溶解到1l，滤器过滤除菌，4℃保存， 用前可在37℃下回温。
10x pbs配方：na2hpo4(14.2g)kh2po4(2.32g) nacl(80g)kcl(2.02g)
(调 至ph=7.4）
五、实验结果
传代后的细胞在2小时左右就能附着在培养瓶壁上，2天左右就在瓶内形成单层， 达到七八成满。这时需再次传代
六、讨论与反思
无菌操作中的注意事项
在无菌操作中，一定要保持工作区的无菌清洁。为此，在操作前要认真地洗手并用75％乙醇消毒。操作前20～30分钟起动超净台灭菌。培养瓶要在超净台内才能打开瓶塞，打开之前和
加塞前瓶口都要在酒精灯上烧一下，打开瓶口后的操作全部都要在超净台内完成。操作完毕后，加上瓶塞，才能拿到超净台外。使用的吸管在从消毒的铁筒中取出后要手拿末端，将尖端在火上烧一下，戴上胶皮乳头，然后再去吸取液体。总之，在整个无菌操作过程中都应该在酒精灯的周围进行。
每天观察细胞形态，掌握好细胞是否健康的标准：健康细胞的形态饱满，折光性好，生长致密时即可传代。
多做，熟能生巧篇二：细胞生物学实验 传代培养
一、【实验目的】
1、了解动物细胞传代培养的基本原理。
2、掌握动物细胞传代培养的基本操作，并对hela细胞进行传代培养。
二、【实验原理】
hela 是heietta lacks的简称，heietta lacks 是一位患有子宫颈癌的美国妇女的名字，在她死后，该细胞走被广泛散发到各研究机构，并无限次地繁殖分裂下去。
培养细胞的特性：
贴附生长：必须贴附于支持物表面才能生长。见于各种实体瘤细胞。
悬浮生长：于悬浮状态下即可生长，不需要贴附于支持物表面。见于各种造血系统肿瘤细胞。 每代贴附生长细胞的生长过程：
1、游离期 细胞接种后在培养液中呈悬浮 状态．也称悬浮期。此时细胞质回缩，胞体呈圆球形。10分钟一4小时
2、贴壁期 细胞附着于底物上，游离期 结束。细胞株平均在10分钟一4小时贴壁。
3、血清中有促使细胞贴壁的冷析球蛋白和纤粘素、胶原等糖蛋白（生长基质），这些带正电荷的糖蛋白的促贴壁因子先吸附于底物上，悬浮细胞再与吸附有促贴壁因子的附着。
4、潜伏期 此时细胞有生长话动，而无细胞分裂。细胞株潜伏期一般为6～24小时。
5、对数生长期 细胞数随时间变化成倍增长，活力最佳，最适合进行实验研究。
6、停止期（平台期） 细胞长满瓶壁后，细胞虽有活力但不再分裂
细胞传代方法
1、悬浮生长细胞传代
离心法传代：离心（1000转/分）去上清，沉淀物加新培养液后再混匀传代。 直接传代法：悬浮细胞沉淀在瓶壁时，将上清培养液去除l／2一2／3，用吸管直接吹打形成细胞悬液再传代。
2.悬浮生长细胞传代（hela细胞）
此类细胞部分呈现贴壁生长现象，但贴壁不牢，可用直接吹打法使纫胞从瓶壁脱落下来，进行传代。
3、贴壁生长细胞传代
采用酶消化法传代。常用的消化液有0.25％的胰蛋白酶液。
细胞培养用液的配制
1、d-hanks原液试剂配方
氯化钠 80.0g 磷酸氢二钠（na hpo ·2h o） 0.6g 氯化钾 4.0g 磷酸二氢钾 0.6g 三蒸水 1000ml
2、d-hanks工作液试剂配方
d-hanks原液 100ml 三蒸水 896ml 0.5% 酚红液 4ml
3、消化液：
胰蛋白酶作用于与赖氨酸或精氨酸相连接的肽健，除去细胞间粘蛋白及糖蛋白，影响细胞骨架，从而使细胞分离。胰蛋白酶液浓度越高，作用越强，但超过一定限度会损伤细胞。胰蛋
白酶是一种黄白色粉末，用无ca2+、mg2+的pbs缓冲液配制常用的胰蛋白酶液浓度是0.25％ 。用滤器过滤除菌。
胰蛋白酶液消化时间：2-10分钟。用含血清培养液终止其对细胞的消化作用
完全培养基的组成基础培养基 80％一95％
血清 5％一20％（一般加10％）
碳酸氢钠2.0 g/l
青、链霉素 各100卑位／毫升
血清质量好坏是实验成败的关键。
常用血清有胎牛血洁、新生牛血清、小牛血情、兔血清、马血清等，其中以胎牛血清质量最好。
优质血清的标准：透明，淡黄色，无沉淀物，无细菌、支原体、病毒污染。 血清的灭活（消除补体活性）：56 ℃ ，30 分钟
血清的消毒：过滤除菌
三、【实验材料】
实验用具：离心管（2支），移液枪（每个台面一把），枪头，吸管（4根），培养皿（每组2个）
实验药品：0.25％胰酶，d－hanks，1640培养基
四、【实验操作】
1. 用75%乙醇擦手，取离心管一个，打开超净台（照明、风机），把离心管置于架子上。然后用75%乙醇擦一下台面，点燃酒精灯。取尖吸管、吸量管各一支，套好吸球，放置在专用的架上。
2．从冰箱中取出0.25％胰酶、d－hanks、培养基。可以把胰酶和d－hanks的瓶盖打开或者拧松。
3.取待传代的细胞，用尖吸管弃去旧的培养基，加入d－hanks。轻轻摇动后将hanks弃掉。
4.用尖吸管吸取适量胰酶加入，加入的量以覆盖整个细胞培养面为宜，轻轻摇动。2－5分钟后迅速将消化液吸出。消化时间长短是实验成败的关键，宁可短消化，不能过消化。否则细胞会变死。在倒置显微镜下观察，当细胞质回缩，胞间间隙加大为消化适宜。
5．取培养基加入细胞，反复轻轻吹打培养皿壁，制备细胞细胞悬液。吹打的部位均匀，从上到小，从左到右，顺序进行吹打，保证各个部位的培养细胞均能吹打到，成片的细胞已经分散成小的细胞团或者单细胞便停止吹打。吹打时用力不要过猛，尽量不要出现气泡，以免损伤细胞。
6．至所有细胞从培养皿底部脱落下来，然后吸取至离心管中。1000 rpm离心5分钟。（无需准确计数时离心可略）
7．细胞离心毕，尖吸管弃去上清，吸取培养基适量，加入离心管，将细胞重悬、吹匀。（无需准确计数时离心可略）
8．吸量管吸取适量培养基1.5ml加入新的培养皿中。细胞悬液0.5ml加入新的培养皿中，培养密度为1×105－×106/ml。显微镜下观察，摇匀，放入37度c02培养箱孵育。
9．待培养基（本身为红色），当ph值降低，培养基呈偏淡红色时，一般2天以后，将旧的培养基吸掉，更换新鲜培养基继续培养。
五、【实验现象】
培养基：rm1640培养基＋10%胎牛血清
六、【实验讨论】
注意事项
1．传代培养时要注意无菌操作并防止细胞之间的交叉污染。所有操作要尽量靠近酒精灯火焰。
每次最好只进行一种细胞的操作。每一种细胞使用一套器材。培养用液应严格分开。
2．每天观察细胞形态，掌握好细胞是否健康的标准：健康细胞的形态饱满，折光性好，生长致密时即可传代。
3．如发现细胞有污染迹象，应立即采取措施，一般应弃置污染的细胞
，如果必须挽救，可加含有抗生素的bss或培养基反复清洗，随后培养基中加入较大量的抗菌素，并经常更换培养基等篇三：实验二_细胞的传代培养[定稿]